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CCL11/Eotaxin 操作使用:把嗜酸性粒细胞迁移做成可重复的标准动作

发表时间:2025-10-11

1. 实验前安全线

  • 粉末冻干品含 0.1 % BSA 载体,开盖即视为无菌失效;若用于后续动物注射,先用 0.22 μm PVDF 低蛋白吸附滤膜过滤,损失率 <5 %。
  • 个人防护:CCL11 对黏膜有趋化刺激,粉末称重戴好 P2 口罩,防止喷嚏连环污染。

2. 复溶与分装

  • 推荐用 1×PBS+0.05 % Tween-20,体积按「终浓度 100 μg/mL」计算,缓慢沿壁加入,涡旋 3 s 即可,禁止剧烈摇晃,防止二聚体升高 10 %。
  • 立即按单次用量 50 μL/管预分装,液氮速冻后 -80 ℃,6 个月内用完;第 3 次冻融后生物活性下降 18 %,Transwell 会出现假阴性。

3. 浓度梯度设置

  • 体外趋化:起始 100 ng/mL,3 倍稀释 7 点,EC?? 落在 8–12 ng/mL;低于 1 ng/mL 背景与随机迁移重叠,高于 300 ng/mL 出现脱敏。
  • 小鼠气管滴注:常用 1 μg/50 μL,4 h BALF 嗜酸细胞升高 4 倍;超过 5 μg 会触发中性粒细胞混杂,流式圈门难度加大。

4. 细胞外液环境

  • Ca2? 浓度 1 mM 是触发整合素信号的关键,低于 0.5 mM 细胞速度降 40 %;Mg2? 仅需 0.4 mM,过量会竞争性抑制 Ca2? 通道。
  • pH 7.2–7.4 区间迁移指数最高,降到 6.8 嗜酸细胞存活率仍 >95 %,但方向性丢失,伪足呈圆周摆动。

5. 嗜酸性粒细胞纯化速通

  • 人外周血:用 Percoll 1.082 两步离心,30 min 拿到 >90 % 纯度;CD16 负选磁珠再踩一脚,纯度升到 98 %,耗时增加 20 min,值得。
  • 小鼠骨髓:IL-5 分化 7 天,收获率 5×10? 细胞/股骨,Day10 后 CCR3 表达开始下调,趋化响应打对折,时间窗别拖。

6. 实时迁移记录

  • 96 孔 Boyden 小室:5 μm 聚碳酸酯膜,先 37 ℃ PBS 润膜 10 min,防止气泡堵孔;下室加 220 μL 含药培养基,上室 5×10? 细胞/100 μL,90 min 固定染色。
  • 微流控芯片:通道高度 6 μm,细胞需稀释到 1×10? /mL,否则堆叠影响轨迹;每隔 30 s 拍照,用 ImageJ “Manual Tracking” 插件,输出 CSV 直接算方向持续性。

7. 读数与统计

  • 细胞计数:显微镜 200× 视野取 5 个固定行,平均后乘系数 2.75 即每孔总数;自动计数仪需设圆度 0.85–1.0,避免碎片误报。
  • 统计:每组 ≥3 独立供体,趋化指数用 Kruskal-Wallis 比较,P<0.05 视为有效;单独 t 检验会放大个体差,容易被审稿人质疑。

8. 常见故障排查

  • 背景高:膜未润湿或上室液面溢出,细胞掉进下室;把板子重新离心 5 min × 300 g,再染色可区分真假迁移。
  • 信号弱:缓冲液存放 >2 周,谷氨酰胺降解,细胞能量不足;现配现用或在 2 ℃暗处保存 ≤48 h。
  • 梯度塌陷:孔间距离太近, incubator 开关门震动导致扩散;用独立小室盒固定,减少搬动。

9. 配套试剂兼容

  • 阻断抗体:抗 CCR3 克隆 5E8,终浓度 10 μg/mL,预孵育 15 min 即可完全抑制迁移,验证特异性必备。
  • 染色液:Giemsa 1× 5 min 快速染色,PBS 漂洗 2 次,背景干净;Wright-Giemsa 需 10 min,时间翻倍效果相似。

10. 实验废弃处理

  • 接触过细胞的枪头、培养皿置入 84 消毒液 1:50 浸泡 30 min,再按生物危害丢弃;CCL11 可吸附在塑料表面,直扔可能造成气溶胶污染。
  • 剩余高浓度母液用 1 M NaOH 中和 1 h,活性降解 >99 %,降低环境排放风险。
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